No Brasil, entre várias espécies de fitonematoides de galha, o Meloidogyne incognita e Meloidogyne javanica, são as mais limitantes à cultura da soja. Seus danos são conhecidos desde a introdução da cultura em território nacional. São espécies altamente polífogas, parasitando monocotiledôneas e dicotiledôneas. Atualmente, algumas cultivares são tolerantes a estes organismos.

O M. incognita está presente com maior frequência em áreas onde é cultivado o algodão ou café, podendo causar prejuízos em soja, feijão e milho, principalmente onde ocorre sucessão de soja e algodão. Em relação ao M. javanica sua ocorrência é mais generalizada, sendo muito comum em lavouras com soja que são cultivadas em sucessão de culturas. Estes fitonematoides são conhecidos pelo engrossamento que promovem nas raízes, conhecidos como galhas. No interior destas galhas é possível observar as fêmeas adultas de coloração branca.

A duração do ciclo dos nematoides de galhas pode variar de 21 a 30 dias, dependendo da temperatura, sendo mais curto o ciclo na faixa de 25°C a 27°C. As massas de ovos contêm cerca de 300 a 400 ovos, e possuem preferência por solos arenoso a médio-arenoso.

Dois sintomas ocorrem de forma direta quando há presença de nematoides de galhas, que são: a formação de galhas radiculares de formatos variáveis (figura 4) e escassez de raízes secundárias. Na parte aérea a planta fica com porte reduzido, folhas verde-claras (figura 5) e vagens chochas. Normalmente, os sintomas nas lavouras são observados em reboleiras.

Figura 4: Sintomas de Meloidogyne spp. Formação de galhas em raízes de soja. Foto: Helder Dota

Figura 5: Sintomas de Meloidogyne spp. na parte aérea de soja. Foto: Helder Dota

Amplamente distribuída no país, o P. brachyurus foi inicialmente relatado como prejudicial ao milho, já na década de 1960, sendo depois constatado como parasita de alta importância para outras culturas, sendo extremamente polífaga. Plantas daninhas, como os capins, são bons hospedeiros alternativos. Seu ciclo tem a duração de 3 a 4 semanas, com o ciclo mais curto em temperaturas de 26 a 30°C.

Os indivíduos possuem o corpo alongado não sendo possível a visualização sem o auxílio de lupa, pois além de ser muito pequenos ficam com o corpo inteiramente dentro das raízes. Solos arenosos e médio-arenoso são mais favoráveis ao desenvolvimento, facilitando sua movimentação, porém, podem ocorrer em solos com diferentes texturas.

Este fitonematoide é altamente agressivo, causando forte redução no número de raízes (figura 6). As raízes remanescentes apresentam lesões necróticas com tonalidade escura, que se originam devido ao ataque deste parasita às células que tiveram toxinas injetadas durante a alimentação do nematoide. Essas raízes parasitadas são contaminadas por fungos e bactérias, resultando em lesões.

Figura 6: Sistema radicular atacado por Pratylenchus brachyurus. Foto: Renata Souza

Um pouco diferente dos demais fitonematoides citados, as infestações com P. brachyurus, tendem a ser mais distribuídas na área contaminada, não apresentando reboleiras tão nítidas. Com o sistema radicular comprometido, há reflexo na parte aérea das plantas que apresentam folhas amareladas e porte reduzido (figura 7).

Figura 7: Sintomas de Pratylenchus brachyurus em lavoura de soja. Foto: Renata Souza

Até o momento, não são conhecidas cultivares resistentes ao fitonematoide das lesões, porém, existem algumas que possuem bom desempenho em áreas infestadas ou com baixo fator de reprodução a P. brachyurus.

A importância deste fitonematoide na soja foi deixada em segundo plano pelo fato de causar perdas apenas em populações elevadas, porém, atualmente seu peso é reconhecido devido ao fato de produtores de soja conviverem com infestações superiores a 1.000 fitonematoides por grama de raiz.

A espécie Rotylenchulus reniformis está presente em todas as regiões brasileiras, tendo sido relatada em 1950, em soja e tomate. Este fitonematoide possui um número elevado de hospedeiros, sendo as culturas mais prejudicadas a do abacaxi, da soja e, principalmente, do algodão. Algumas plantas daninhas também são suas hospedeiras.

A duração do seu ciclo pode variar de 2,5 a 4 semanas, dependendo da temperatura e do hospedeiro. As fêmeas imaturas (forma infectante) migram no solo a procura de raízes da soja para penetrar. Ali, passam a se alimentar e tornam-se sedentárias. Com o crescimento do seu corpo, a porção que fica fora da raiz adquire contornos semelhantes a de um rim, daí sua denominação reniforme.

Esta espécie não forma galhas, porém, ocorre uma redução do sistema radicular e, em alguns pontos da raiz, é possível ver camadas de terra aderidas às massas de ovos (50 a 120 ovos por massa). Diferente dos demais fitonematoides destacados aqui, que ocorrem em soja, o reniforme não parece ter sua ocorrência prejudicada pela textura do solo, ocorrendo tanto em solos arenosos como argilosos. A ocorrência destes organismos em áreas com solos férteis e argilosos, onde os sintomas nas raízes não ficam evidentes, faz com que sejam muitas vezes menosprezados.

A infestação por R. reniformis, não ocorre em reboleiras, típicas de outros fitonematoides, mas há desuniformidade de plantas em extensas áreas, com plantas subdesenvolvidas, semelhante a problemas de deficiência mineral ou compactação de solo, mas sem caracterizar nanismo e clorose.

Na soja, as principais fontes de resistência genética aos fitonematoides de cisto, possuem grande chance de também ser resistentes ao Rotylenchulus reniformis. Mesmo que alguns híbridos de milho multipliquem o fitonematoide reniforme, em geral, a rotação com essa cultura contribui para reduzir a população do organismos no solo.

Tentar estabelecer densidades populacionais a certos níveis de danos é uma tarefa extremamente complexa e difícil, uma vez que vários fatores estão envolvidos, tais como: solo, características culturais, clima e amostragem.

Nos Estados Unidos, o nível de dano para Rotylenchulus reniformis está por volta de 600 fitonematoides por 200 cm3 de solo, porém, no Brasil, ainda não há valores estabelecidos. Existem poucos trabalhos no país sobre densidades populacionais, veja na tabela 1 algumas informações adaptadas de diferentes autores.

Tabela 1: Parâmetros de análise sobre densidades populacionais. Fonte: Aprosmat, 2012.

A identificação de fitonematoides nas lavouras não é uma tarefa simples, além de possuir tamanho microscópico, dificultando seu reconhecimento a campo, muitas vezes seus sintomas são confundidos com outros problemas que podem ocorrer, como: estiagens, deficiência de nutrientes, aplicação de forma errada, compactação do solo, fitotoxidade, doenças, entre outros.

Desta forma, para a realização de um manejo eficiente, estabelecido com estratégias adequadas para cada espécie, é necessária a coleta de amostras de solo e raízes para envio ao laboratório de análises nematologicas. Esta prática tem por objetivo confirmar a presença de namatoides no solo e também de identificar qual é a espécie presente e, principalmente, determinar a densidade populacional no solo e nas raízes das plantas analisadas.

Nesse sentido, é muito importante que a coleta de amostras no campo seja feita corretamente. Veja abaixo, um passo a passo dos procedimentos para coleta de amostras de solo e raízes para análise de nematoide.

1. O melhor momento para coletar a amostragem de solo para realização do exame nematológico é o período de florescimento e frutificação;
2. As amostras coletadas devem estar com umidade natural. Evite condições encharcamento ou ressecamento excessivo. Não adicione água ao solo que está naturalmente seco para fazer a coleta, e nem após no volume coletado;
3. Cave o solo em formato de V, com uma profundidade entre 20 e 30 cm, pois é na rizosfera da planta que os nematoides estão em maior população. Se tratando de raízes, na grande maioria dos casos, deve-se coletar preferencialmente as raízes mais finas, que devem estar vivas. Existem diversas ferramentas para a coleta de amostras, mas a que permite maior facilidade na coleta de raízes é o enxadão;
4. Para uma amostra representativa, mantenha um caminho em zig-zag, coletando as amostras junto as plantas com sintomas. A coleta deve ser composta também por solo e raízes sem sintomas para avaliar a disseminação. Em caso de reboleiras, evite as plantas centrais ou em condições severas de desenvolvimento;
5. A amostra composta deve ser formada por subamostras coletadas em área uniforme quanto ao tipo de solo e histórico agrícola. Deposite as subamostras em um balde grande e bem misturadas, de modo a constituir uma amostra composta representativa da área. A quantidade de cada amostra composta deve girar em torno de 1 litro de solo e 100g de raízes finas;
6. Em grandes áreas é recomendado fazer a coleta de 15 a 20 subamostras a cada 10 hectares, para formar uma amostra composta. Para que os resultados sejam mais representativos e confiáveis, quanto maior o número de subamostras e de amostras compostas coletadas, melhor;
7. Acondicione as amostras de solo e de raízes juntas em sacos plásticos resistentes. Nas fichas e etiquetas que acompanharão as amostras coloque o maior número possível de informações como: número da amostra, local, proprietário, cultura atual, cultivar, danos e sintomas, culturas anteriores, tipo de solo, plantas daninhas ocorrentes, tratos culturais realizados, nome do coletor, data de coleta, entre outras. Inclua também os dados do interessado para contato caso haja necessidade de conversar sobre o tipo de análise a ser realizada ou sobre alguma prática de manejo estabelecida;
8. Envie as amostras ao laboratório o mais rápido possível. Evite, durante esse processo de transporte, a exposição da amostra ao sol, assim como, seu aquecimento. Caixas térmicas são bastante úteis para a conservação de amostras durante o transporte para o laboratório;
9. As amostras podem ser conservadas em refrigerador, em temperaturas em torno de 10°C a 15°C. Não congele as amostras;
10. Produtos químicos também podem afetar as amostras. Portanto, acondicione-as em recipientes limpos, sem resíduos tóxicos.